Comparan y evalúan el diferencial de leucocitos en un analizador de hematología
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Por el equipo editorial de LabMedica en español Actualizado el 24 Aug 2021 |

Imagen: El analizador de hematología Celltac G completamente automático de 33 parámetros (Fotografía cortesía de Nihon Kohden)
Un hemograma completo (CBC), es un conjunto de pruebas de laboratorio médico que proporcionan información sobre las células en la sangre de una persona. El CBC indica los recuentos de glóbulos blancos, glóbulos rojos y plaquetas, la concentración de hemoglobina y el hematocrito (el porcentaje de volumen de los glóbulos rojos).
Los diferentes modelos de analizadores de hematología utilizan varios principios para medir el recuento sanguíneo completo (CBC) y el diferencial de leucocitos para pruebas de rutina en los laboratorios clínicos. El rendimiento de la exactitud de un analizador de hematología se evalúa utilizando el recuento diferencial manual de leucocitos (Manual-Diff) en extendidos delgados de sangre (Wedge-Diff) como método de referencia tradicional.
Los laboratorios clínicos del Hospital Universitario de Kindai (Osakasayama, Japón), seleccionaron para la comparación de métodos, 598 muestras clínicas y 46 muestras de voluntarios sanos. Todas las muestras se recogieron en tubos que contenían K2-EDTA. Los tubos de extracción de sangre, el procedimiento de extracción de sangre y el procedimiento de mezcla se realizaron de acuerdo con los métodos descritos. Para la comparación de métodos entre los tres analizadores, se utilizaron 388 muestras clínicas. Los frotis de sangre se colorearon con May-Giemsa.
El analizador de hematología automatizado Celltac G (Nihon Kohden, Tokio, Japón), fue diseñado para mejorar el desempeño del diferencial de leucocitos. Los dos analizadores de hematología comparativos (CAA) utilizados fueron el XN-9000 (Sysmex, Kobe, Japón) y el CELL-DYN Sapphire (Abbott Diagnostics, Santa Clara, CA, EUA). Para el diferencial manual, se utilizaron dos tipos de fabricantes de láminas automatizados: el Sysmex SP-10 para la técnica de extendido delgado y el SPINNER-2000 (Lion-Power, Komatsu, Japón) para la técnica de Giro. Se seleccionó como método de referencia diferencial de leucocitos inmunofenotípicos (FCM-Ref) y se utilizó un citómetro de flujo Navios (Beckman-Coulter, Indianápolis, IN, EUA).
Los investigadores informaron que Celltac G mostró suficiente comparabilidad con los CAA para cada valor de recuento diferencial de leucocitos hasta 40,87 × 109/L y suficiente comparabilidad con el FCM-Ref para cada porcentaje del diferencial de leucocitos de 0,4 a 78,5. La proporción de identificación de FCM-Ref en las células positivas para CD45 fue del 99,7% (99,4% a 99,8%). Se encontraron diferencias entre el FCM-Ref/Celltac G/XN-9000/Spinner-Diff y el Wedge-Diff para monocitos y neutrófilos. La relación de aparición de células en canasta en la película del extendido delgado y del Spinner fue del 12,5% y del 0,5%.
Los autores concluyeron que el diferencial de leucocitos del analizador hematológico Celltac G, mostró una exactitud adecuada en comparación con dos analizadores hematológicos comparativos, el método de citometría de flujo de referencia y dos métodos manuales, y se consideró adecuado para uso clínico. El estudio fue publicado el 12 de junio de 2021 en la revista Journal of Clinical Laboratory Analysis.
Enlace relacionado:
Kindai University Hospital
Sysmex
Abbott Diagnostics
Lion-Power
Beckman-Coulter
Los diferentes modelos de analizadores de hematología utilizan varios principios para medir el recuento sanguíneo completo (CBC) y el diferencial de leucocitos para pruebas de rutina en los laboratorios clínicos. El rendimiento de la exactitud de un analizador de hematología se evalúa utilizando el recuento diferencial manual de leucocitos (Manual-Diff) en extendidos delgados de sangre (Wedge-Diff) como método de referencia tradicional.
Los laboratorios clínicos del Hospital Universitario de Kindai (Osakasayama, Japón), seleccionaron para la comparación de métodos, 598 muestras clínicas y 46 muestras de voluntarios sanos. Todas las muestras se recogieron en tubos que contenían K2-EDTA. Los tubos de extracción de sangre, el procedimiento de extracción de sangre y el procedimiento de mezcla se realizaron de acuerdo con los métodos descritos. Para la comparación de métodos entre los tres analizadores, se utilizaron 388 muestras clínicas. Los frotis de sangre se colorearon con May-Giemsa.
El analizador de hematología automatizado Celltac G (Nihon Kohden, Tokio, Japón), fue diseñado para mejorar el desempeño del diferencial de leucocitos. Los dos analizadores de hematología comparativos (CAA) utilizados fueron el XN-9000 (Sysmex, Kobe, Japón) y el CELL-DYN Sapphire (Abbott Diagnostics, Santa Clara, CA, EUA). Para el diferencial manual, se utilizaron dos tipos de fabricantes de láminas automatizados: el Sysmex SP-10 para la técnica de extendido delgado y el SPINNER-2000 (Lion-Power, Komatsu, Japón) para la técnica de Giro. Se seleccionó como método de referencia diferencial de leucocitos inmunofenotípicos (FCM-Ref) y se utilizó un citómetro de flujo Navios (Beckman-Coulter, Indianápolis, IN, EUA).
Los investigadores informaron que Celltac G mostró suficiente comparabilidad con los CAA para cada valor de recuento diferencial de leucocitos hasta 40,87 × 109/L y suficiente comparabilidad con el FCM-Ref para cada porcentaje del diferencial de leucocitos de 0,4 a 78,5. La proporción de identificación de FCM-Ref en las células positivas para CD45 fue del 99,7% (99,4% a 99,8%). Se encontraron diferencias entre el FCM-Ref/Celltac G/XN-9000/Spinner-Diff y el Wedge-Diff para monocitos y neutrófilos. La relación de aparición de células en canasta en la película del extendido delgado y del Spinner fue del 12,5% y del 0,5%.
Los autores concluyeron que el diferencial de leucocitos del analizador hematológico Celltac G, mostró una exactitud adecuada en comparación con dos analizadores hematológicos comparativos, el método de citometría de flujo de referencia y dos métodos manuales, y se consideró adecuado para uso clínico. El estudio fue publicado el 12 de junio de 2021 en la revista Journal of Clinical Laboratory Analysis.
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